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    醫學職稱評定大鼠神經內分泌功能變化

    所屬分類:醫學論文 閱讀次 時間:2016-02-18 15:02

    本文摘要:本篇文章是由《 中華醫學 》發表的一篇醫學論文,創刊于1995年,是由中華臨床醫學會主辦的臨床醫藥類專業學術期刊。在2000年10月被定為臨床醫藥類核心期刊。分別由我國著名的臨床專家執編,全國各優秀醫院院長及專家為顧問團,審稿嚴慎,因而期刊具有較高的

      本篇文章是由《中華醫學》發表的一篇醫學論文,創刊于1995年,是由中華臨床醫學會主辦的臨床醫藥類專業學術期刊。在2000年10月被定為臨床醫藥類核心期刊。分別由我國著名的臨床專家執編,全國各優秀醫院院長及專家為顧問團,審稿嚴慎,因而期刊具有較高的實用性、指導性和權威性,是全國醫學界與社會各界互通通信息的重要渠道,是全國醫學界進行學術交流、切磋醫學經驗的重要平臺。

      【摘要】 目的 探討睡眠剝奪(sleep deprivation,SD) 對大鼠神經內分泌功能變化的影響。方法 將60只Wistar雄性大鼠隨機分為6組(每組10只):空白對照組(C組)、 AS對照組(AS組)、ASSD1天組(SD1d組)、ASSD3天組(SD3d組)、ASSD5天組(SD5d組)、ASSD7天組(SD7d組)。5組建立AS模型后,其中4組再建立,SD模型,分析各組大鼠心電圖變化、生理及行為改變,測定各組大鼠血清中促腎上腺皮質激素(adrenocorticotropic hormone,ACTH)及皮質醇(cortisol,CORT)的含量。結果 SD后AS大鼠精神狀態逐漸轉差,反應變遲鈍、變虛弱,隨著SD時間的延長,AS大鼠呈先興奮,然后激惹,最后衰竭的變化趨勢。隨著SD的時間延長,AS大鼠心率呈先增快后減慢的波動性變化。心電圖ST-T逐漸上抬,T波高聳直立。ACTH及CORT水平呈先增高后下降的波動性變化。結論 SD造成的應激性刺激,能夠激活HPA軸,從而引起AS大鼠神經內分泌功能發生變化。

      【關鍵詞】 睡眠剝奪 動脈粥樣硬化 神經內分泌

      睡眠剝奪(sleep deprivation,SD) 具體指人因環境或自身原因喪失了所需要睡眠量的一種過程和狀態。SD影響了機體固有的生物節律,使機體處于應激狀態。本研究以神經內分泌系統所產生的促腎上腺皮質激素(adrenocorticotropic hormone,ACTH)及皮質醇(cortisol,CORT)為切入點,通過測定其在大鼠血清中的表達量在不同SD時間情況下的波動情況,分析各組大鼠神經內分泌功能狀態,并結合各組大鼠心電圖變化、生理及行為改變來反映SD對大鼠神經內分泌功能變化的影響。

      1材料與方法

      1.1分組

      60只Wistar雄性大鼠(由中山大學動物實驗中心提供),體重(250±10

      )g。隨機分為6組:空白對照組(C組)10只、大平臺對照組(A組)10只、ASSD1d組(SD1d組)10只、ASSD組3d組(SD3d組)10只、ASSD5d組(SD5d組)10只、ASSD7d組(SD7d組)10只。

      1.2 建立大鼠AS 模型

      參照文獻[1] 方法,50只大鼠在腹腔注射維生素D3 (60 萬u/ kg) 后,給予高脂飼料(3 %膽固醇,0. 5 %膽酸鈉,0. 2 %丙基硫氧嘧啶,5 %白糖,10 %豬油,81. 3 %基本飼料) 喂養8周可形成典型的AS 病變。

      1.3 建立AS大鼠睡眠剝奪模型

      以“改良多平臺水環境SD法”制備SD模型[2]。將4組大鼠,每組各放在一個裝有15個小平臺的水槽中飼養(主要是利用大鼠怕水及在水中無法進入睡眠的生活習性,通過在盛水的水槽中放置平臺,讓大鼠站立在平臺上,大鼠在平臺上可自由進食飲水,并可在平臺間自由活動。因平臺直徑足夠小(直徑6.5cm),若其睡眠,會因全身肌張力降低引起節律性低頭、觸水或落入水中驚醒,來達到SD的目的),以此建立起ASSD模型。SD1d組為持續SD1天,SD3d組為持續SD3天,SD5d組為持續SD5天,SD7d組為持續SD7天。為排除隔離及水環境造成的影響,將A組10只大鼠放置在大平臺上飼養,采用與SD組大小一樣的水箱,但在其底部放置的平臺大小為30cm×18cm×8cm,大鼠在平臺上有一定活動空間,可以自由睡眠,用以形成與SD各組相似的環境,其他環境與實驗組相同。C組采用正;\養,自然晝夜光照,喂基礎飼料。實驗前1周將實驗所需大鼠放至一只籠中飼養,熟悉適應環境1周。

      1.4 觀察各組大鼠生理及行為改變

      觀察各組大鼠的精神狀態、反應能力以及行為表現的變化。

      1.5 各組大鼠心電圖監測

      將大鼠用20%烏拉坦0.8ml/kg注射麻醉,約5min待大鼠安靜后,在小動物實驗臺上仰臥固定大鼠。接通RM-6000多通道生理儀電源,打開機器,將針電極(注射器針頭連于電極)分別向心刺入大鼠四肢皮下,電極連線分為紅色(R)右上肢、黃色(L)左上肢、黑色(RF)右下肢、綠色(LF)左下肢。描記標準導聯II導聯體表心電圖并進行分析,記錄心率及ST段位移值。描記條件為:標準電壓:為20mm/mV,描記速度為50mm/s。通過觀察心電圖ST位移值(ST段位移值變化以QRS波群起點連線為基線,測量點取J點后0.02s)可反映心肌缺血程度。心電圖形及間期測量方法按徐叔云等[3]方法進行。

      1.6 各組大鼠血清ACTH及CORT含量測定

      各組大鼠在相應時間點用10%水合氯醛(0.3 m1/100 g體質量)大鼠腹腔注射麻醉,用毛細玻管眶內靜脈取血2 ml, EDTA抗凝,靜置0.5 h后4℃,3 000 r/min離心10 min,取血漿1 ml,保存在-70℃的冰箱中,以備待測ACTH和CORT的含量。用放射免疫分析法統一測定ACTH和CORT含量,按試劑盒說明書進行操作。ACTH及CORT試劑盒由南京建成生物工程研究所提供。

      1.7 統計學方法

      采用SPSS 13.0統計軟件,計數資料以 _ X±s表示,組間均數比較采用完全隨機設計單因素方差分析,多組間兩兩比較采用LSD檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。

      2結果

      2.1 各組大鼠生理及行為改變 SD后大鼠精神狀態逐漸轉差,反應變遲鈍,食欲不振,身體漸消瘦、變虛弱,皮毛變粗糙、蓬亂而沒有光澤。SD初期,大鼠精神亢奮,對聲音、氣味、光線等刺激的反應較敏捷。行為興奮性提高,較為活躍。到SD第3天時,SD3d組中所有大鼠出現磕睡、節律性垂頭現象,并常因鼻子浸入水中或掉入水中而驚醒。到SD第5天時,SD5d組中所有大鼠表現煩躁、易怒、相互之間喜撕咬、打斗。至SD第7天時,SD7d組中所有大鼠均表現為呼吸加快,精神萎靡,而對聲音、氣味、光線等刺激的敏感性下降。低頭駝背,蜷縮顫抖,不喜動,活動能力明顯減退。進食少,身體極度虛弱。

      2.2 各組大鼠心率變化

      SD后大鼠心率變化較大。SD剛開始時大鼠心率先是極度增快,于SD1d時心率最快達到最高值,與SD5d組及SD7d組相比較,差異具有統計學意義(P<0.001)。隨著SD時間的延長,心率逐漸減慢。

      與C組比較,a p<0.01;與AS組比較,b p<0.01;與 SD1d組比較,c p<0.01;與SD3d組比較,d p<0.01;與SD5d組比較,e p<0.01。

      2.3 各組大鼠心電圖ST-T改變

      C組大鼠心電圖ST-T改變與SD3d組、SD5d組及SD7d組比較,差異均具有統計學意義(P<0.05)。A組與SD5d組及SD7d組比較,均有顯著性差異(P<0.001)。SD1d組與SD5d組及SD7d組比較,差異均具有統計學意義(P<0.001)。SD3d組與SD5d組及SD7d組間兩兩比較,均有顯著性差異(P<0.001)。隨著SD的時間延長,大鼠心電圖ST-T逐漸上抬,T波高聳直立。(見表2,圖1-6)

      表2 各組大鼠心電圖ST-T改變( _ X±s)

      2.4 大鼠血清ACTH含量變化

      C組、A組、SD1d組三組之間相互兩兩比較無顯著性差異(P>0.05)。該三組分別與SD3d組、SD5d組、SD7d組間相互兩兩比較差異均有顯著性(P<0.001)。隨著SD時間的延長,大鼠血清ACTH含量,先呈現升高的趨勢,并在SD3d時大鼠血清ACTH含量達到最高值,與SD5d組、SD7d組間比較差異均具有統計學意義(P<0.001)。之后大鼠血清ACTH含量呈明顯的下降趨勢,至SD7d時,其ACTH含量最低,與SD5d組比較差異具有統計學意義(P<0.001)。(見表3)

      表3 各組大鼠血清ACTH含量變化( _ X±s)

      與C組比較, a p<0.01;與AS組比較,b p<0.01;與 SD1d組比較,c p<0.05,d p<0.01;與SD3d組比較,e p<0.01;與SD5d組比較,f p<0.01。

      2.5 大鼠血清CORT含量變化

      C組、A組、SD1d組、SD3d組、SD5d組及SD7d組間相互兩兩比較,均有顯著性差異(P<0.05)。隨著SD時間的延長,大鼠血清CORT含量先呈逐漸升高趨勢,至SD5d時達到最高值,CORT含量約為C組的2倍,之后降低。(見表4)

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